LAPORAN PRAKTIKUM MEDIA SIM DAN UREA

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

     Bakteri merupakan organisme mikroskopik. Hal ini menyebabkan organisme ini sangat sulit untuk dideteksi, terutama sebelum ditemukannya mikroskop. Barulah setelah abad ke-19 ilmu tentang mikroorganisme, terutama bakteri (bakteriologi) mulai berkembang. Seiring dengan perkembangan ilmu pengetahuan, berbagai hal tentang bakteri telah berhasil ditelusuri (Diktat Mikrobiologi Dasar).

     Berdasarkan atas penemuan para tokoh maka muncullah suatu proses yang dinamakan penanaman bakteri baik melalui media padat, cair ,ataupun semi solid. Mikroorganisme dapat ditumbuhkan dan dikembangkan pada suatu substrat yang disebut medium. Medium yang digunakan untuk menumbuhkan dan mengembangbiakkan mikroorganisme tersebut harus sesuai susunanya dengan kebutuhan jenis-jenis mikroorganisme yang bersangkutan. Beberapa mikroorganisme dapat hidup baik pada medium yang sangat sederhana yang hanya mengandung garam anargonik di tambah sumber karbon organik seperti gula. Sedangkan mikroorganime lainnya memerlukan suatu medium yang sangat kompleks yaitu berupa medium ditambahkan darah atau bahan-bahan kompleks lainnya (Volk dkk,1993).

     Akan tetapi yang terpenting medium harus mengandung nutrisi yang merupakan substansi dengan berat molekul rendah dan mudah larut dalam air. Nutrisi ini adalah degradasi dari nutrisi dengan molekul yang kompleks. Nutrisi dalam medium harus memenuhi kebutuhan dasar makhluk hidup, yang meliputi air, karbon, energi, mineral dan faktor tumbuh (Label, 2008).

     Berdasarkan hal tersebut, maka di lakukanlah praktikum ini untuk  mengetahui medium yang digunakan untuk menumbuhkan dan mengembangbiakkan mikroorganisme yang  sesuai susunannya dengan kebutuhan jenis-jenis mikroorganisme yang bersangkutan. Medium adalah bahan yang terdiri dari campuran zat-zat untuk menambahkan mikroba. Selain itu juga berguna untuk isoalsi sifat-sifat fisiologi dan perhitungan jumlah mikroba dalam satu bahan. (Volk dkk,1993).

1.2. Tujuan

         Untuk mengetahui proses pembuatan media SIM dan Urea

1.3 Manfaat

          Memberikan informasi tentang cara pembuatan media SIM dan Urea

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Teori

    Mikroorganisme dapat ditumbuhkan dan dikembangkan pada suatu substrat yang disebut medium. Medium yang digunakan untuk menumbuhkan dan mengembangbiakkan mikroorganisme tersebut harus sesuai susunanya dengan kebutuhan jenis-jenis mikroorganisme yang bersangkutan. Beberapa mikroorganisme dapat hidup baik pada medium yang sangat sederhana yang hanya mengandung garam anargonik di tambah sumber karbon organik seperti gula. Sedangkan mikroorganime lainnya memerlukan suatu medium yang sangat kompleks yaitu berupa medium ditambahkan darah atau bahan-bahan kompleks lainnya (Volk,dan Wheeler,1993.Mikrobiologi Dasar Jilid 1).

   Pada pertumbuhannya terjadi sintesa yang khas dan berimbang dari komponen-komponen protoplasma dari bahan-bahan gizi (nutrien) yang terdapat dalam lingkungannya (Mikrobiologi Kedokteran).

   Bakteri itu berbeda-beda, contohnya: Chleamydiaceeae mempunyai daur perkembangan yang unik, yaitu terdapat bentuk infeksius yang secara metabolik bersifat inaktif (badan elementer,elementary body EB) dan bentuk noninfeksius yang secara metabolik bersifat aktif (badan retikulat,reticulate body, RB) (Sylvia,2009,Bakteri Intra Seluler).

   Medium adalah bahan yang terdiri dari campuran zat-zat untuk menambahkan mikroba. Selain itu juga berguna untuk isolasi sifat-sifat fisiologi dan perhitungan jumlah mikroba dalam suatu bahan. Medium pembiakan yang digunakan untuk mengembangbiakkan bakteri di laboraturium dapat dibedakan dalam: medium pembiakan dasar, medium pembiakan penyubur, medium pembiakan selektif, dan cara mendapatkan  biakan murni (Drs.Koes irianto,2006,mikrobiologi).

   Begitu tersedia kodinsi yang memuaskan untuk kultivasi, maka reproduksi dan pertumbuhan bakteri dapat diamati dan diukur, untuk menentukan pengaruh berbagai kondisi baik terhadap reproduksi dan pertumbuhan bakteri tersebut, dan untuk menentukan perubahan-perubahan apa saja yang dihasilkan oleh bakteri di dalam lingkungan tumbuhnya.

   Untuk menelaah bakteri di laboratorium kita harus dapat menumbuhkan bakteri dalam biakan murni. Untuk melakukan hal itu, haruslah mengerti jenis-jenis nutrisi yang disyaratkan oleh bakteri dan juga macam lingkungan fisik yang menyediakan kondisi optimum bagi pertumbuhannya.

   Dalam pembuatan medium harus ada beberapa persyaratan yang harus dipenuhi yaitu sebagai berikut :

1.  Mengandung semua zat yang mudah digunakan oleh mikroba.

2.  Tidak mengandung zat penghambat pertmubuhan.

3.  Mempunyai tekanan osmose dan tekanan muka.

4.  Mempunyai derajat keasaman (pH) yang sesuai.

5.  Dan dalam keadaan steril.

   Jenis-jenis medium berdasarkan komponen dasar pembuatannya :

1. Medium kompleks.

2.  Medium yang tersusun dari bahan kimia tertentu.

   Jenis medium berdasarkan komposisimediumnya :

1.  Medium umum.

2.   Medium diperkaya.

3.   Medium selektif.

4.   Medium diferensial.

Jenis medium berdasarkan komposisi bentuknya :

1.  Medium cair.

2.  Medium semi padat.

3. Medium padat

              (Sinta dkk,2010,Praktikum Mikrobiologi Dasar).

   Biakan murni adalah biakan yang hanya berisi 1 jenis bakteri (Pelczar et al.,1988). Ada berbagai cara untuk mengisolasi bakteri dalam biakan murni yaitu, cara pengenceran, cara penuangan, Masing-masing mempunyai kelebihan dan kekurangan (Waluyo, 2007).

1.      Cara pengenceran

   Cara pengenceran yaitu dengan mengencerkan misalnya 1 ose bakteri dengan air. Lalu hasil pengenceran tersebut diencerkan lagi dengan beberapa ketentuan. Hal ini bertujuan untuk mengurangi konsentrasi bakteri(Barazandeh,2008).Cara ini pertama-tama dilakukan oleh Lister dalam tahun 1865. Ia berhasil memiara murni Streptococcus lactis yang diisolasikannya dari susu yang sudah masam. Suatu sampel dari suatu suspensi yang berupa campuran bermacam-macam spesies diencerkan dalam suatu tabung tersendiri. Dari enceran ini kemudian diambil 1 ml untuk diencerkan lagi. Dan dari pengenceran yang kedua ini diambil 1 ml untuk diencerkan lebih lanjut. Jika dari pengenceran yang ketiga ini diambil 0,1 ml untuk disebarkan pada suatu medium padat, kemungkinan besar kita akan mendapatkan beberapa koloni tumbuh dalam medium tersebut, tetapi mungkin juga kita hanya memperoleh satu koloni saja. Dalam hal yang demikian ini kita memperoleh satu koloni murni, dan selanjutnya spesies ini dapat kita jadikan biakan murni. Kalau kita belum yakin, bahwa koloni tunggal yang kita peroleh itu murni, kita dapat mengulang pengenceran dengan menggunakan koloni ini sebagai sampel.

2.  Cara  Penuangan

   Cara ini pertama dilakukan oleh Robert Koch (1843 – 1905), yaitu dengan mengambil sedikit sampel campuran bakteri yang sudah diencerkan, dan sampel ini kemudian disebarkan di dalam suatu medium dari kaldu dan gelatin encer. Teknik ini memerlukan agar yang belum padat (>45oC) untuk dituang bersama suspensi bakteri ke dalam cawan petri lalu kemudian dihomogenkan dan dibiarkan memadat. Hal ini akan menyebarkan sel-sel bakteri tidak hanya pada permukaan agar saja melainkan sel terendam agar (di dalam agar) sehingga terdapat sel yang tumbuh dipermukaan agar yang kaya O2 dan ada yang tumbuh di dalam agar yang tidak banyak begitu banyak mengandung oksigen. Adapun prosedur kerja yang dilakukan adalah sebagai berikut : Siapkan cawan steril, tabung pengenceran yang akan ditanam dan media padat yang masih cair (>45oC), Teteskan 1 ml secara aseptis. suspensi sel kedalam cawan kosong,tuangkan media yang masih cair ke cawan kemudian putar cawan untuk menghomogenkan suspensi bakteri dan media, kemudian diinkubasi.

 (Volk,dan Wheeler,1993.Mikrobiologi Dasar Jilid 1).

2.2 Media SIM

    Media SIM (Sulfide Indole Motility) adalah media differensial. Media ini digunakan untuk tes kemampuan organisme untuk melakukan beberapa hal yaitu mengurangi sulfur, menghasilkan indole dan berjalan melalui agar-agar. SIM umumnya digunakan untuk membedakan anggota Enterobacteriaceae. Sulfur dapat direduksi menjadi H2S (Hidrogen Sulfida) baik oleh katabolisme asam amino sistem oleh desulfurase sistem enzim atau dengan pengurangan thiosulphate dalam respirasi anaerobik. Jika hidrogen sulfida diproduksi maka warna hitam akan terbentuk dimedia.(Rachel Watson, 2012)

2.3 Media Urease

    Tujuan dari uji ini adalah untuk mengetahui apakah kuman mempunyai enzim urease yang dapat menguraikan urea membentuk amoniak. Media urea berisi indikator phenol red. Interpretasi hasil : negatif (-) : tidak terjadi perubahan warna media menjadi pink/merah jambu, artinya kuman tidak memecah urea membentuk amoniak. Positif (+) : tidak terjadi perubahan warna media menjadi pink/merah jambu, artinya kuman memecah urea membentuk amoniak (Lim, 2006).

   

BAB III

METODE PRAKTIKUM

3.1 Alat

8. Spatula 9. Autoclave 10. Korek 11. Lampu Spritus/ Lampu Bunsen 12. Kertas pH

1. Tabung reaksi

2. Kaca Arloji

3. Batang Pengaduk

4. pipet tetes

5. Erlenmeyer

6. Gelas Ukur

7. Rak Tabung

3.2  Bahan

      Media SIM

 1. SIM Agar Powder

 2. Aquades

      Media Urea

 1. Urea

 2. Aquades

3.3  Prosedur Kerja

      Prosedur Kerja Media SIM

1. Siapkan alat dan bahan.

2. Timbang SIM Agar powder sebanyak 2.4 gr menggunakan neraca    

     analitik, setelah ditimbang diletakan dalam Erlenmeyer.

3. Larutkan SIM Agar powder dengan aquadest sebanyak 80 ml,  

    homogenkan.

4. Setelah di homogenkan. Tutup larutan menggunakan kapas dan berikan   

    label.

5. Panaskan larutan diatas hot plate dengan suhu 300°c jangan sampai

    mendidih karena dapat merusak mikroorganisme.

6. Setelah larutan dipanaskan, kemudian bungkus menggunakan kertas hingga

    menutupi seluruh bagian erlenmeyer.

7. Kemudian Sterililasikan didalam autoclave dengan suhu 121°c selama 15

    Menit.

8. Pindahkan media dalam tabung reaksi. Pada saat menuang nyalakan

    bunsen agar tidak terkontaminasi bakteri lain.

9. Setelah itu masukan kedalam lemari pendingin.

Prosedur Kerja Media Urea

1. Siapkan alat dan bahan.

2. Timbang Urea powder sebanyak 5 gr menggunakan neraca   

     analitik, setelah ditimbang diletakan dalam Erlenmeyer.

3. Larutkan Urea powder dengan aquades sebanyak 100 ml, lalu diaduk   

    menggunakan batang pengaduk dan homogenkan.

4. Setelah di homogenkan. Tutup larutan menggunakan kapas dan berikan   

    label.

5. Panaskan larutan diatas hot plate dengan suhu 250°c jangan sampai

    mendidih karena dapat merusak mikroorganisme.

6. Setelah larutan dipanaskan, kemudian bungkus menggunakan kertas hingga

    menutupi seluruh bagian erlenmeyer.

7. Kemudian sterililasikan didalam autoclave dengan suhu 121°c selama 15

    Menit.

8. Pindahkan media dalam tabung reaksi. Pada saat menuang nyalakan

    bunsen agar tidak terkontaminasi bakteri lain.

9. Setelah itu masukan kedalam lemari pendingin.

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Pengamatan

      Media SIM dan Urea

No.	Gambar	Keterangan
1.		Setelah disterilisasi media SIM dimasukan ke dalam tabung reaksi
2.		Setelah disterilisasi media Urea dimasukan ke dalam tabung reaksi

4.2 Pembahasan                                                                           

     Media SIM (Sulfide Indole Motility) adalah media yang berbentuk semi solid. Media SIM adalah media differensial untuk uji biokimia. Media ini bukan media pertumbuhan melainkan media uji biokimia yang merupakan fermentasi yang dilakukan oleh bakteri. Bakteri yang hidup pada media ini akan memfermentasi Indole (semacam senyawa) yang terdapat dalam media. Media SIM hampir sama dengan media TSI yaitu sama-sama merupakan media dalam tabung yang berfungsi untuk pengujian biokimia. Hanya saja media SIM tidak dimiringkan pada penyimpanannya. Hal ini disebabkan agar dapat melihat berapa panjang pergerakkan bakteri dari atas sampai ke bawah. Pergerakan bakteri ke bawah berbentuk seperti pohon cemara terbalik, dan pergerakkannya ke bawah selalu meruncing.

     Peptone pada media SIM merupakan sumber energi atau nutrisi begi mikroorganisme berupa protein dan karbohidrat, sodium thiosulphate sebagai sumber mineral dan energi bagi mikroorganisme, kandungan Agar sebagai bahan pemadat media dan tempat tumbuhnya mikroorganisme. Casein pepton berfungsi untuk menghasilkan tripton yang nantinya akan membentuk indole dan sebagai sumber karbon. Media SIM ini mengandung natrium thiosulfat, namun media ini boleh dan atau harus diautoclave karena media ini merupakan media diferensial. Kandungan Natrium thiosulphate tidak terlalu berpengaruh pada media ini.

       Urea merupakan senyawa kimia organik yang dihasilkan dari proses metabolisme protein. Tujuan dari urea digunakan untuk differensial mikroorganisme yang dapat bereaksi dengan urea.

BAB V

PENUTUP

5.1 Kesimpulan

     Media SIM adalah media differensial untuk uji biokimia. Media ini bukan media pertumbuhan melainkan media uji biokimia yang merupakan fermentasi yang dilakukan oleh bakteri. Sedangkan media urea digunakan untuk differensial mikroorganisme yang dapat bereaksi dengan urea.

5.2 Saran

     Pada Saat pembuatan media pastikan segala peralatan yang digunakan telah steril agar tidak terkontaminasi dengan bakteri.Pada saat memasukan larutan kedalam tabung reaksi gunakan bunsen agar terhindar dari kontaminasi bakteri.

LAPORAN PRAKTIKUM REAGEN PEMBUATAN LARUTAN NATRIUM TIOSULFAT DAN ASAM SULFAT

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

       Definisi larutan sendiri adalah campuran homogen dua zat atau lebih yang saling melarutkan dan masing-masing zat penyusunnya tidak dapat dibedakan lagi secara fisik. Larutan terdiri atas zat terlarut dan pelarut. Dalam larutan fase cair, pelarutnya (solvent) adalah cairan, dan zat yang terlarut di dalamnya disebut zat terlarut (solute), bisa berwujud padat, cair, atau gas. Khusus untuk larutan cair, maka pelarutnya adalah volume terbesar. Pada saat pembuatan larutan hal yang harus diperhatikan yaitu volume, massa, serta konsentrasi dari larutan yang akan dibuat. Konsentrasi sendiri didefinisikan sebagai jumlah solute yang ada dalam sejumlah larutan atau pelarut. Konsentrasi dapat dinyatakan dalam beberapa cara, antara lain molaritas, molalitas, normalitas dan sebagainya. Molaritas yaitu jumlah mol solute dalam satu liter larutan, molalitas yaitu jumlah mol solute per 1000 gram pelarut sedangkan normalitas yaitu jumlah gram ekuivalen solute dalam 1 liter larutan. Dalam pembuatan larutan dengan konsentrasi tertentu sering dihasilkan konsentrasi yang tidak tepat dengan yang diinginkan, maka dari itu dalam pembuatan larutan harus dilakukan seteliti mungkin dan menggunakan perhitungan yang tepat, sehingga hasil yang didapatkan sesuai dengan yang diharapkan.

1.2 Tujuan

      Untuk mengetahui cara membuat larutan dengan konsentrasi tertentu serta mengencerkan larutan.

1.3 Manfaat

      Memberikan informasi mengenai cara pembuatan larutan dengan konsentrasi tertentu serta mengencerkan larutan.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Definisi Larutan

     Larutan adalah campuran homogen (komposisinya sama), serba sama (ukuran partikelnya), tidak ada bidang batas antara zat pelarut dengan zat terlarut (tidak dapat dibedakan secara langsung antara zat pelarut dengan zat terlarut), partikel- partikel penyusunnya berukuran sama (baik ion, atom, maupun molekul) dari dua zat atau lebih. Dalam larutan fase cair, pelarutnya (solvent) adalah cairan, dan zat yang terlarut di dalamnya disebut zat terlarut (solute), bisa berwujud padat, cair, atau gas. Dengan demikian, larutan = pelarut (solvent) + zat terlarut (solute). Khusus untuk larutan cair, maka pelarutnya adalah volume terbesar. (Sofyan. 2012.)

2.2 Reaksi-Reaksi Dalam Larutan

a.       Eksoterm, yaitu proses melepaskan panas dari sistem ke lingkungan, temperatur dari campuran reaksi akan naik dan energi potensial dari zat- zat kimia yang bersangkutan akan turun.

b.      Endoterm, yaitu menyerap panas dari lingkungan ke sistem, temperatur dari campuran reaksi akan turun dan energi potensial dari zat- zat kimia yang bersangkutan akan naik. (Sofyan. 2012)

2.3  Pembagian Larutan

A.    Pembagian Larutan Berdasarkan kelarutan zat terlarut :

1.      Larutan jenuh adalah suatu larutan dimana zat terlarut berada didalam kesetimbangan dengan fase padat (zat terlarut).. Atau dengan kata lain, larutan yang partikel- partikelnya tepat habis bereaksi dengan pereaksi (zat dengan konsentrasi maksimal). Larutan jenuh terjadi apabila bila hasil konsentrasi ion = Ksp berarti larutan tepat jenuh.

2.      Larutan lewat jenuh adalah suatu larutan yang mengandung zat terlarut dalam konsentrasi lebih banyak dari pada yangs seharusnya, ada pula temperature tertentu, terdapat juga zat yang tidak larut.. Atau dengan kata lain, larutan yang tidak dapat lagi melarutkan zat terlarut sehingga terjadi endapan. Larutan sangat jenuh terjadi apabila bila hasil kali konsentrasi ion > Ksp berarti larutan lewat jenuh (mengendap). (Titi. 2015)

B.     Pembagian Larutan berdasarkan Konsentrasi

    Berdasarkan banyak sedikitnya zat terlarut, larutan dapat dibedakan menjadi dua yaitu:

1.    Larutan pekat yaitu larutan yang mengandung relatif lebih banyak solute dibanding solvent.

2.    Larutan encer yaitu larutan yang relatif lebih sedikit solute dibanding solvent. (Putra. 2015)

C.      Pembagian Larutan berdasarkan daya hantar larutan

     Berdasarkan daya hantarnya larutan terbagi 2 yaitu :

a.       Larutan elektrolit adalah larutan yang dapat menghantarkan arus listrik dengan memberikan gejala berupa menyalanya lampu pada alat uji atau timbulnya gelmbung gas dalam larutan .Larutan yang menunjukan gejala – gejala tersebut pada pengujian tergolong ke dalam larutan elektrolit.. Larutan elektrolit dapat dibedakan menjadi 2 yaitu:

1.      Elektrolit kuat mempunyai daya hantar yang relatif tinggi walaupun konsentrasinya relatif kecil. Yang tergolong dalam elektrolit kuat adalah:

-          Asam-asam kuat, seperti : HCl, HClO₃, H₂SO₄, HNO₃

-          Basa-basa kuat, yaitu basa-basa golongan alkali dan alkali tanah, seperti: NaOH, KOH, Ca(OH)₂, Ba(OH)₂ dan lain-lain.

-          Garam-garam yang mudah larut, seperti: NaCl, KI, Al₂(SO4)₃ dan lain-lain.

2.      Elektrolit lemah mempunya daya hantar yang relatif rendah walaupun konsentrasinya relatif besar.

-          Asam-asam lemah, seperti : CH₃COOH, HCN, H₂CO₃,

-          Basa-basa lemah seperti : NH₄OH, Ni(OH)₂ dan lain-lain

-          Garam-garam yang sukar larut, seperti : AgCl, CaCrO₄, PbI2

3.      Larutan nonelektrolit adalah larutan yang tidak dapat menghantarkan arus listrik dengan memberikan gejala berupa tidak ada gelembung dalam larutan atau lampu tidak menyala pada alat uji. Larutan yang menunjukan gejala – gejala tersebut pada pengujian tergolong ke dalam larutan nonelektrolit.. Tergolong ke dalam jenis ini misalnya: Larutan urea, larutan sukrosa, larutan glukosa, larutan alkohol dan lain-lain (Andin. 2012.)

2.4 Definisi Konsentrasi

      Konsentrasi adalah istilah umum untuk menyatakan banyaknya bagian zat terlarut dan pelarut yang terdapat dalam larutan. Konsentrasi dapat dinyatakan secara kuantitatif maupun secara kualitatif. Untuk ukuran secara kualitatif, konsentrasi larutan dinyatakan dengan istilah larutan pekat (concentrated) dan encer (dilute). Kedua isitilah ini menyatakan bagian relatif zat terlarut dan pelarut dalam larutan. Larutan pekat berarti jumlah zat terlarut relatif besar, sedangkan larutan encer berarti jumlah zat terlarut relatif lebih sedikit. Biasanya, istilah pekat dan encer digunakan untuk membandingkan. (Inkar. 2012)

2.5 Molaritas

     Molaritas menyatakan jumlah mol zat terlarut dalam setiap satu liter larutan. Molaritas dilambangkan dengan notasi M dan satuannya adalah mol/liter. Secara matematis dirumuskan seperti berikut:

 Jika volume larutan dinyatakan dalam ml maka rumus molaritas dapat dinyatakan dengan:

m : massa zat terlarut Mr : massa molekul relative

Keterangan:

M : molaritas (mol/L)

n  : Jumlah mol (mol)

  V  :  Volume larutan (L)

(Mahmud. 2016)

2.6 Molalitas

     Kemolalan atau konsentrasi molal (m) menyatakan banyaknya mol zat terlarut dalam 1000 gram pelarut. Secara matematis, dapat dirumuskan:

   Keterangan:

M      : Molalitas

G       : Massa zat terlarut

P       : Massa zat pelarut

M_{r        :} Massa molekul relatif (Mahmud. 2016)

2.7 Normalitas

    Normalitas menyatakan jumlah ekuivalen zat terlarut dalam 1 liter larutan.

Keterangan:

N  = Normalitas larutan

ek = ekuivalen zat terlarut

V   = volume larutan

M  = molaritas

a    = valensi (banyaknya ion)

m   = massa zat terlarut

(Mahmud. 2016)

2.8 Uraian Bahan

1.      Aquadest (Ditjen POM. 1995)

Nama resmi          : AQUADESTILLATA

Nama lain             : Air suling, Aquadest

Rumus kimia        : H₂O

Berat molekul       : 18,02

Pemerian             : Cairan jernih, tidak berwarna, tidak berbau, tidak  

                                mempunyai rasa.

Penyimpanan        : Dalam wadah tertutup.

2.      Kalium Iodida (Ditjen POM. 1979)

Nama Lain           : Kalium iodida

RM/BM                : KI / 166,00

Pemerian              : Hablur heksahedral, transparan atau tidak   berwarna, opak

                               dan putih, atau serbuk butiran putih. Higroskopik.

Kelarutan             : Sangat mudah larut dalam air, lanih mudah larut dalam air

                                mendidih, larut dalam etanol 95 % P, mudah larut dalam

                                gliserol P.

Kegunaan             : Sebagai reduktor yang melepaskan I₂

Penyimpanan        : Dalam wadah tertutup baik

3.      Natrium Tiosulfat (Ditjen POM. 1995)

Nama lain             : Natrium tiosulfat/hipo

RM/ BM               : Na₂S₂O₃ / 248,17

Pemerian              : Hablur besar tidak berwarna /serbuk hablur kasar. Dalam

                               lembab meleleh basah, dalam hampa udara merapuh.

Kelarutan             : larut dalam 0,5 bagian air,praktis tidak larut dalam etanol

Kegunaan             : Sebagai penitrasi

Penyimpanan       : Dalam wadah tertutup rapat.

4.      Asam Sulfat (Ditjen POM. 1995)

Nama lain             : Asam sulfat

RM/ BM               : H₂SO₄ / 98,07

Pemerian              : Cairan kental seperti minyak,korosif,tidak berwarna jika

                                ditambahkan dalam air menimbulkan panas.

Kegunaan             : Sebagai sampel

Penyimpanan       : Dalam wadah tertutup rapat

BAB III

METODE PRAKTIKUM

3.1  Waktu dan Tempat

    Praktikum pembuatan larutan ini dilakukan pada 2 Desember 2017, di kampus Stikes  Bina  Mandiri Gorontalo.

3.2  Alat

     Pada pelaksaan praktikum kali ini menggunakan alat-alat laboratorium seperti labu takar, pipet tetes, batang pengaduk, gelas kimia, botol reagen, kaca arloji, dan spatula.

3.3   Bahan

     Bahan yang digunakan pada praktikum kali ini yaitu aquadest, natrium tiosulfat, asam sulfat, dan kalium iodida.

3.4  Prosedur Kerja

1.      Prosedur Kerja Natrium Tiosulfat

     Menghitung massa yang akan diukur menggunakan rumus molaritas. Menimbang N₂S₂O₃ dan KI menggunakan neraca analitik. Mengisi N₂S₂O₃­ dan KI yang telah di timbang kedalam gelas kimia kemudian di encerkan dengan aquades. Menuang N₂S₂O_3­ dan KI  ­kedalam labu ukur kemudian tambahkan aquades hingga mencapai batas 100 ml, Homogenkan. Memindahkan larutan yang telah di encerkan kedalam botol kemudian di berikan label.

2.      Prosedur Kerja Asam Sulfat

          Menghitung volume yang akan diukur menggunakan rumus pengenceran. Memipet larutan Asam Sulfat sebanyak 16 ml kemudian masukan ke dalam labu takar. Mengisi labu takar dengan aquades hingga mencapai batas garis pada labu takar, homogenkan. Memindahkan larutan yang telah di encerkan kedalam botol kemudian di berikan label.

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

1.     

M2   = 0.05 N V2    = 100 ml    0,1 L

Menghitung massa  Na₂S₂O₃ dengan konsentrasi 0.1 N dan 0.05 N dengan volume  100 ml.

Dik: M₁   = 0.1 N

 V₁    = 100 ml             0,1 L

 Mr  = 248.17

Dit: gr ?

=  2,4817 X 0.05  0.124085

Penye:

 =  2,4817 X 0.1

 0.24817

2.      Menghitung massa KI dengan konsentrasi 10% dengan volume  50 ml

Dik: M   =  10%

        V    = 50 ml

Dit: gr ?

              Penye:

% =

                 10% =

     B = 0.1 X 50

     B = 5 gr

3.      Menghitung molaritas H₂SO₄ dengan konsentrasi 95%  dan massa jenis air 1,8 kg/l

Dik: %massa = 95%                                                                                  

Mr = 98

Dit : M ?

Penye :

M =

M =

M = 18

4. Menghitung H₂SO₄

Dik :  M₁ = 18

M₂ = 4

V₂ = 100 ml

Dit : V₁ ?

Penye :

V₁ X M₁ = V₂ X M₂

V₁ X 18 = 100 X 4

V₁ =

V₁ = 22,22 ml

Normalitasnya :  = 11,11 ml

4.2 Pembahasan

   Pada percobaan pertama dilakukan pelarutan zat padat untuk mendapatkan konsentrasi larutan. Pada percobaan ini menggunakan padatan N₂S₂O₃ dan KI sebagai zat yang akan dilarutkan dengan menggunakan aquadest sebagai pelarut. Percobaan ini dilakukan untuk mendapatkan larutan N₂S₂O₃ 0.1 N dan 0.05 N serta KI 10 % masing masing 100 ml dan 50 ml. Berdasarkan perhitungan yang telah dilakukan, massa N₂S₂O₃ 0.1 N yang dibutuhkan adalah 0.25 gr untuk N₂S₂O₃ 0.05 N sebanyak 0.12 gr sedangkan untuk KI dibutuhkan 5 gr untuk membuat KI 10%. Faktor kesalahan pada peercobaan ini adalah pengukuran menggunakan neraca analitik yang kurang tepat dan pengukuran volume larutan yang kurang pas pada meniskus bawah.

Reaksi Ionisasi:

                             N₂S₂O₃                        2Na⁺ + S₂O₃^2-

                             KI                                K⁺ + I^-

     Pada percobaan kedua dilakukan pengenceran larutan. Pengenceran merupakan perlakuan untuk mendapatkan konsentrasi larutan yang lebih rendah dari yang sebelumnya. Percobaan ini menggunakan H₂SO₄ sebagai larutan yang akan diencerkan sekaligus merupakan zat terlarut dan menggunakan aquadest sebagai pelarut. Percobaan ini dilakukan untuk mendapatkan H₂SO₄ 4 N sebanyak 100 ml. Berdasarkan perhitungan volume H₂SO₄ yang dibutuhkan adalah 22,22 ml. Kemudian 22,22 ml H₂SO₄ dimasukkan kedalam labu takar 100 ml dan ditambahkan aquadest hingga larutan menjadi 100 ml. Fungsi penambahan akuades adalah untuk menurunkan konsentrasi dari H₂SO₄. Faktor kesalahan dari praktikum ini adalah ketika pengukuran volume larutan tidak pas pada meniskus bawah.

Reaksi Ionisasi:

H₂SO­₄                       2H⁺ + SO₄^2-

BAB V

PENUTUP

5.1 Kesimpulan

1.      Massa yang diperlukan untuk membuat N₂S₂O₃ 0,1 N dengan volume sebanyak 100 ml sebanyak 0.24817 gr.

2.      Massa yang diperlukan untuk membuat N₂S₂O₃ 0,05 N dengan volume sebanyak 100 ml sebanyak 0.124085 gr.

3.      Massa yang diperlukan untuk membuat KI 10% dengan volume sebanyak 50 ml sebanyak 5 gr.

4.      Volume yang dibutuhkan untuk membuat H₂SO₄ 4 M sebanyak 100 ml adalah 22,22 ml

5.2  Saran

     Semua praktikan harus mengikuti prosedur yang telah di tetepkan sehingga praktikan terhindar dari resiko-resiko yang mungkin terjadi pada saat praktikum berlangsung.